Экспериментальное исследование эффективности выкраивания кожно-жирового лоскута под контролем люминесцентной спектроскопии

Введение. В настоящее время в различных областях хирургии является актуальным совершенствование техник выкраивания кожных лоскутов.

Цель. Оценить эффективность выкраивания кожного лоскута под контролем люминесцентной спектроскопии в эксперименте.

Материалы и методы. Проспективное нерандомизированное прямое исследование проводилось на 17 беспородных кроликах на базе экспериментального вивария Кабардино-Балкарского университета с марта по апрель 2025 г. На первом этапе выполнялась отсепаровка кожи на животе длиной 12 см. После ее экспозиции выполнялась тотальная биопсия, изготавливались гистологические препараты с дальнейшей морфометрией. Полученные показатели сопоставлялись с интенсивностью люминесценции. На втором этапе были прооперированы 14 беспородных кроликов, разделенных на равные группы. 1-й группе после отсепаровки лоскута проводилась его фиксация на прежнее место без укорочения, 2-й группе выполнялось укорочение выкроенного лоскута под люминесцентным контролем. Продолжительность эксперимента составила 21 день. Оценивались клинико-лабораторная динамика, количество и площадь гнойных осложнений. Для статистической обработки данных использовали программное обеспечение SPSS 17.0.

Результаты. При амплитуде сигнала в 0,95 ± 0,15 × 10⁵ фотонов в микропрепаратах отмечалась минимальная площадь некрозов. В контрольной группе отмечено нагноение раны у 5 животных (площадь – 4,35 ± 0,11 см²), в опытной группе – у 2 (площадь – 1,34 ± 0,14 см², р = 0,005). Некроза кожного лоскута в опытной группе не отмечалось. При биопсии раны с морфометрией гистологических препаратов на 21-е сут. выявлено более интенсивное развитие соединительной ткани в опытной группе и большая выраженность местного воспаления в группе контроля. На секции животных после выведения из эксперимента в группе контроля выявлены признаки острого сепсиса.

Выводы. Использование метода ультрафиолетовой люминесцентной спектроскопии является эффективным при определении границ выкраивания кожно-жирового лоскута у кроликов.

1. Alves M, Mendes M, Valença-Filipe R, Rebelo M, Peres H, Costa-Ferreira A. Long Drainers After Abdominoplasty: A Risk Analysis. Aesthetic Plast Surg. 2025;49(9):2525–2533. https://doi.org/10.1007/s00266-025-04773-4.

2. Lovald ST, Topp SG, Ochoa JA, Gaball CW. Biomechanics of the monopedicle skin flap. Otolaryngol Head Neck Surg. 2013;149(6):858–864. https://doi.org/10.1177/0194599813505836.

3. Gibbons MS, Gruber PJ, Syed S, Sell SA, Carroll CJ, Maher IA. Mechanical Strain of the Trilobed Transposition Flap in Artificial Skin Models: Pivotal Restraint Decreases With Decreasing Rotational Angles. Dermatol Surg. 2021;47(1):30–33. https://doi.org/10.1097/DSS.0000000000002522.

4. Ha JH, Lee SY, Choi TH, Park SO. Surgical delay increases the survival of expanded random-pattern flap in pediatric patients. Sci Rep. 2023;13(1):19204. https://doi.org/10.1038/s41598-023-45852-3.

5. Green C, Plyler D, Masadeh S, Bibbo C. Reconstructive Amputations of the Foot. Clin Podiatr Med Surg. 2021;38(1):17–29. https://doi.org/10.1016/j.cpm.2020.08.002.

6. Cheung LK, Skepastianos V, Kostopoulos E, Skepastianos G. “Nip and Tuck”: Training the Next Generation of Aesthetic Plastic Surgeons. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2025;13(1):e6470. https://doi.org/10.1097/GOX.0000000000006470.

7. Cannistrà C, Lori E, Arapis K, Gallo G, Varanese M, Pironi D et al. Abdominoplasty after massive weight loss. Safety preservation fascia technique and clinical outcomes in a large single series-comparative study. Front Surg. 2024;11:1337948. https://doi.org/10.3389/fsurg.2024.1337948.

8. Monteiro IA, de Sousa Barros A, Costa-Ferreira A. Postbariatric Abdominoplasty: A Comparative Study on Scarpa Fascia Preservation Versus Classical Technique. Aesthetic Plast Surg. 2023;47(6):2511–2524. https://doi.org/10.1007/s00266-023-03455-3.

9. Cristofari S, Halimi C, Van Dieren L, Stivala A, Lellouch AG, Janin A. Use of perfusion device for free flap salvage after ischemia in swine. Ann Chir Plast Esthet. 2024;69(5):376–383. https://doi.org/10.1016/j.anplas.2024.07.004.

10. Arellano JA, Comerci AJ, Liu HY, Alessandri Bonetti M, Nguyen VT, Parent B et al. Complications in Prolonged Intraoperative Ischemia Time in Free Flap Breast Reconstruction: A Systematic Review and Meta-Analysis. Aesthetic Plast Surg. 2025;49(5):1262–1270. https://doi.org/10.1007/s00266-024-04382-7.

11. Golpanian S, Gerth DJ, Tashiro J, Thaller SR. Free Versus Pedicled TRAM Flaps: Cost Utilization and Complications. Aesthetic Plast Surg. 2016;40(6):869–876. https://doi.org/10.1007/s00266-016-0704-z.

12. Sutcu M, Keskin M, Karacaoglan N. Abdominoplasty with “En block” removal of the skin island: a safe and fast approach. J Plast Surg Hand Surg. 2022;56(3):160–166. https://doi.org/10.1080/2000656X.2021.1953040.

13. Graf R, de Araujo LR, Rippel R, Neto LG, Pace DT, Cruz GA. Lipoabdominoplasty: liposuction with reduced undermining and traditional abdominal skin flap resection. Aesthetic Plast Surg. 2006;30(1):1–8. https://doi.org/10.1007/s00266-004-0084-7.

14. Sjöberg T, Numan A, de Weerd L. Liberal versus Modified Intraoperative Fluid Management in Abdominal-flap Breast Reconstructions. A Clinical Study. Plast Reconstr Surg Glob Open. 2021;9(9):e3830. https://doi.org/10.1097/GOX.0000000000003830.

15. Nelson JA, Fischer JP, Grover R, Mirzabeigi MN, Nelson P, Wes AM et al. Intraoperative perfusion management impacts postoperative outcomes: an analysis of 682 autologous breast reconstruction patients. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 2015;68(2):175–183. https://doi.org/10.1016/j.bjps.2014.10.002.

16. Бабкина АС. Лазер-индуцированная флуоресцентная спектроскопия в диагностике тканевой гипоксии (обзор). Общая реаниматология. 2019;15(6):50–61. https://doi.org/10.15360/1813-9779-2019-6-50-61.

17. Rampazzo E, Prodi L, Petrizza L, Zaccheroni N. Luminescent Silica Nanoparticles Featuring Collective Processes for Optical Imaging. Top Curr Chem. 2016;370:1–28. https://doi.org/10.1007/978-3-319-22942-3_1.

18. Burikov SA, Sarmanova OE, Fedyanina AA, Plastinin IV, Dolenko TA. A step towards versatile temperature luminescent nanosensor: Combination of luminescent and time-resolved spectroscopy of NaYF₄:Yb³⁺/Tm³⁺ nanoparticles. Spectrochim Acta A Mol Biomol Spectrosc. 2025;334:125902. https://doi.org/10.1016/j.saa.2025.125902.

19. Zhang S, Qin S, Xiao Y, Liu Z, Hu X, Xiao Z et al. Near-infrared luminescent materials: a review of their practical applications and prospective advancements. Dalton Trans. 2025;54(17):6717–6740. https://doi.org/10.1039/d4dt03538k.

20. Тимурзиева АБ. Использование рaмaн-флуоресцентных технологий в ранней диагностике воспалительных и опухолевых заболеваний как часть стратегического направления формирования общественного здоровья и инструмент для повышения качества оказания медицинской помощи: обзор литературы. Лазерная медицина. 2021;25(4):42–50. https://doi.org/10.37895/2071-8004-2021-25-4-42-50.

21. Tow DH, Chan CH, Howe JR, Ear PH. A luminescent sensor for investigating serotonin metabolism in neuroendocrine cancer. Surgery. 2024;175(3):726–734. https://doi.org/10.1016/j.surg.2023.09.018.

22. Lam SE, Mat Nawi SN, Abdul Sani SF, Khandaker MU, Bradley DA. Raman and photoluminescence spectroscopy analysis of gamma irradiated human hair. Sci Rep. 2021;11(1):7939. https://doi.org/10.1038/s41598-021-86942-4.

23. Pur MRK, Hosseini M, Faridbod F, Ganjali MR. Highly sensitive label-free electrochemiluminescence aptasensor for early detection of myoglobin, a biomarker for myocardial infarction. Microchim Acta. 2017;184:3529–3537. https://doi.org/10.1007/s00604-017-2385-y.

24. Inman JL, Wu Y, Chen L, Brydon E, Ghosh D, Wan KH et al. Long-term, non-invasive FTIR detection of low-dose ionizing radiation exposure. Sci Rep. 2024;14(1):6119. https://doi.org/10.1038/s41598-024-56491-7.

25. Shang L, Nienhaus GU. In Situ Characterization of Protein Adsorption onto Nanoparticles by Fluorescence Correlation Spectroscopy. Acc Chem Res. 2017;50(2):387–395. https://doi.org/10.1021/acs.accounts.6b00579.

26. Wu KJ, Wu C, Chen F, Cheng SS, Ma DL, Leung CH. Time-Resolved Luminescent High-Throughput Screening Platform for Lysosomotropic Compounds in Living Cells. ACS Sens. 2021;6(1):166–174. https://doi.org/10.1021/acssensors.0c02046.

27. Еремеев АВ, Пикина АС, Владимирова ТВ, Богомазова АН. Методы оценки жизнеспособности клеток, культивируемых in vitro в 2D и 3D-структурах. Гены и клетки. 2023;18(1):5–21. https://doi.org/10.23868/gc312198.

28. Афанасьева АН, Сапарова ВБ, Сельменских ТА, Макаренко ИЕ. Выбор оптимального метода детекции жизнеспособности клеточных культур для тестов на пролиферативную активность и цитотоксичность. Лабораторные животные для научных исследований. 2021;(2):16–24. https://doi.org/10.29296/2618723X-2021-02-03.

29. Ваганов АГ, Кузнецов МР, Артыков АБ, Анисимова АВ, Насритдинходжаев АО. О точном определении уровня ампутации нижних конечностей с помощью фотолюминесцентной спектроскопии. Казанский медицинский журнал. 2025;106(1):129–138. https://doi.org/10.17816/KMJ642025.

30. Илюхин ЕА, Булатов ВЛ, Гальченко МИ. Точность и воспроизводимость измерения площади фантомных поражений кожи неправильной формы с помощью мобильного приложения LesionMeter. Флебология. 2020;14(4):266–274. https://doi.org/10.17116/flebo202014041266.

31. Heuvelings DJI, Scheepers MHMC, Al-Difaie Z, Okamoto N, Diana M, Stassen LPS et al. Quantitative analysis of intestinal perfusion with indocyanine green (ICG) and methylene blue (MB) using a single clinically approved fluorescence imaging system: a demonstration in a porcine model. Surg Endosc. 2024;38(7):3556–3563. https://doi.org/10.1007/s00464-024-10864-1.

32. Quang TT, Wei CF, Walsh SA, Papay FA, Liu Y. Real-time tissue perfusion assessment using fluorescence imaging topography scanning system: A preclinical investigation. Lasers Surg Med. 2022;54(7):994–1001. https://doi.org/10.1002/lsm.23560.

33. Yeung TM. Fluorescence imaging in colorectal surgery. Surg Endosc. 2021;35(9):4956–4963. https://doi.org/10.1007/s00464-021-08534-7.